PCR产物纯化试剂盒
【产品编号】A3
【储存保存】 磁珠置于 2-8℃保存，其它组分常温（15-25℃）保存
【使用范围】适用于从 PCR 反应产物及其它酶促反应物中，提取纯化高质量 DNA，适用于手动、半自动、全自动化核酸提取纯化平台。
【作用原理】在一定的缓冲液体系中磁珠吸附 DNA，借助外加磁场作用与溶液中盐离子、引物等杂质分离，经过洗涤除杂，在一定的洗脱液缓冲体系中将 DNA 重新释放
到溶液中，达到快速分离纯化高质量 DNA 。
【注意事项】
1．磁珠溶液使用前需充分震荡混匀。
2.使用前应先检查溶液 A 是否浑浊，如有浑浊现象，可在 37℃烘箱或水浴加热几
分钟，混匀至沉淀完全溶解。
3．请勿将磁珠溶液冷冻、离心、干燥。
【产品组成】
| 试剂盒组成 | 数量（100T） | 数量（200T） |
| 溶液A | 7.5mlx1瓶 | 15mlx1瓶 |
| 磁珠溶液 | 0.6mlx1瓶 | 1.2mlx1瓶 |
| 洗脱液 | 7.5mlx1瓶 | 15mlx1瓶 |
【操作步骤】 （以 50ul PCR 产物为例）
1. 取 50µlPCR 、酶切或酶标反应液加到相应的（例如 1.5ml）离心管中，加入 50µl 的溶液 A，6µl 磁珠（ 用前 震荡 混匀磁珠溶液），涡旋震荡 10 秒钟；室温放置 5min（ 期间 震匀 荡混匀 2-3 次）。
注：如果没有相应的 震荡器，可以用移液器 吹打置 混匀后，室温放置 5min ，放置过程中，抽匀 打混匀 2-3 次。
2. 将离心管置于磁力架上静置 30s，吸弃上清液。
注：勿将磁珠吸出；吸弃液体时，勿将反应管/ 反应板从磁力架上取下，务必吸净离心
管内残留的液体。
3. 向离心管中加入 200µl 的 85%乙醇，室温下放置 30s，倒弃管内的液体；尽可能吸弃上清液（置 吸弃上清后可放置 1min ，再除去残留液体）；
注：勿将磁珠吸出；此步骤中 勿将反应管/ 反应板从磁力架上取下；务必吸净离心管内残留的液体。
4. 重复上述步骤 3。
5. 离心管开盖放置在磁力架上，尽量除尽上清（ 吸弃上清后可放置 1-2min ，再除去残留液体 ），让磁珠在室温下干燥 5～10 min。
注：乙醇残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR 等）实验。但要避免过分干燥磁珠，
以免难以洗脱核酸。 。
6. 移去磁力架，向离心管中加入 20-50 µl 洗脱液，用移液器抽打或涡旋震荡混匀磁珠溶液，室温放置 5min（ 期间轻点混匀磁珠溶液 2-3 次）。
7. 将离心管置于磁力架上，静置 30s，小心吸取上清液至干净的离心管中，即得较高纯度的 DNA，直接用于下游实验或-20℃保存。
注意：在操作中如发现管壁或管盖上有液体可以短时离心将其甩至管底。 洗脱液的体积不于 应少于 20 μl， 体积过少会影响回收的效率 。的 洗脱液的 PH 值对洗脱效率有很大影响，若用ddH2O 做洗脱液，应保证其 PH 值在 7.0-8.5 范围内，PH 值低于 7.0 会降低洗脱效率。且 DNA产物应保存在-20 ℃，以防 DNA 降解。